Evaluación de la capacidad antioxidante y metabolitos secundarios de extractos de dieciséis plantas medicinales / Evaluation of antioxidant capacity and secondary metabolites of sixteen medicinal plants extracts
Resumen
El presente estudio evaluó la capacidad antioxidante de los extractos de dieciséis plantas medicinales: escoba amarga (Parthenium hysterophons), ajenjo (Artemisia absinthium), guarumo (t), chaya (Cnidoscolus chayamansa), borraja (Borago officinalis), balsa (Ochroma sp.), linaza (Linum usitatissimum), hierba Luisa (Cymbopogon citratus), toronjil (Melissa officinalis), buganvilla (Bougainvillea spectabilis), alcachofa (Cynara scolymus), guaviduca (Piper carpunya), altamisa (Ambrosia cumanensis), diente de león (Taxacum officinales), buscapina (Parietaria officinalis) y moringa (Moringa oleifera). Para ello, se usó el método DPPH (radical 1,1-difenil-2-picrilhidrazil); además, se realizaron ensayos de reconocimiento de metabolitos secundarios a fin de obtener los primeros indicios de compuestos de interés fitoquímico. La actividad captadora de radicales libres de los extractos se expresó como valor de IC50 (μg/mL) (cantidad necesaria para inhibir la formación de radicales DPPH en un 50%). El valor bajo de IC50 refleja mejor acción eliminadora de radicales libres. Aunque la mayoría de las muestras evaluadas mostraron buena capacidad antioxidante con este método (DPPH), los ensayos de los extractos hidro-alcohólicos demuestran que la alcachofa (IC50 9,89 μg/mL), moringa (IC50 11,4 μg/mL) y borraja (IC50 14,0 μg/mL) presentaron mayor capacidad antioxidante. Mediante las pruebas químicas de caracterización, se detectó la presencia de flavonoides, taninos, triterpenos, alcaloides y saponinas en la mayoría de las especies analizadas (aproximadamente 56-69%); tan sólo un 20% de las mismas mostró la presencia de polifenoles, glucósidos cianogénicos, lactonas, cumarinas, esteroles y antraquinonas. Según los resultados, se podría considerar a estas plantas como fuentes prometedoras de metabolitos secundarios con actividad antioxidante. ABSTRACTThis study evaluated the antioxidant capacity of sixteen medicinal plants: Escoba amarga (Parthenium hysterophons), ajenjo (Artemisia absinthium), guarumo (Cecropia obtusifolia), chaya (Cnidoscolus chayamansa), borraja (Borago officinalis), balsa (Ochroma sp.), linaza (Linum usitatissimum), hierba Luisa (Cymbopogon citratus), toronjil (Melissa officinalis), buganvilla (Bougainvillea spectabilis), alcachofa (Cynara scolymus), guaviduca (Piper carpunya), altamisa (Ambrosia cumanensis), diente de León (Taxacum officinales), buscapina (Parietaria officinalis)and moringa (Moringa oleifera). For this, the DPPH (radical 1, 1-difenil-2-picrilhidrazil) method was used; furthermore, recognition assays of secondary metabolites were performed, in order to obtain the first signs of phytochemical compounds of interest. The free radical scavenging activity of the extracts was expressed as IC50 value (g/mL) (necessary amount to inhibit the formation of 50% of DPPH radical). The low value of IC50 reflects better free radical scavenging action. Although most of the samples tested showed good antioxidant capacity with this method (DPPH), tests of hydroalcoholic extracts show that alcachofa (IC50 9.89 mg/mL), moringa (IC50 11.4 mg/mL) and borraja (IC50 14.0 mg/mL) were those with higher antioxidant capacity. Through chemical characterization tests, the presence of flavonoids, tannins, triterpenes, alkaloids and saponins were detected in most of the analyzed species (approximately 56-69%); only 20% of them showed the presence of polyphenols, cyanogenic glycosides, lactones, coumarins, anthraquinones and sterols. According to the results obtained, these plants might be considered as promising sources of secondary metabolites with antioxidant activity.Descargas
Citas
Abad M, Bedoya L y Bermejo P (2011). The Artemisia L. Genus: A Review of Bioactive Essential Oils. Molecules, 17(3) 2542-2566.
Acevedo D., Navarro M y Montero P. (2013).Composición Química del aceite esencial de las hojas de toronjil (Melissa officinalis L.). Información Tecnológica, 24(4), 49-54.
Águila B., Meneses R., González L., Madrigal E y Fernández D. (2000). Extracto acuoso de escoba amarga. Estudio preliminar de sus propiedades. Revista Cubana plantas medicinales, 5, 123-4.
Blair S y Madrigal B. (2005). Plantas antimaláricas de Tumaco, Costa Pacífica Colombiana, ed.Universidad de Antioquia. 49p. Brand-Williams W., Cuvelier M. E y Berset C. (1995). Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT. Food Science and Technology 28: 25- 30.
Cai Y., Sun M., Xing J., Luo Q., y Corke H. (2006). Structure-radical scavenging activity relationships of phenolic compounds from traditional Chinese medicinal plants. Life Science, 78(25), 2872-2888.
Cárdenas-Tello, C., Pozo-Rivera, W., Almirall, E. y Roque, A. (2016). Fitoquímica de extractos de Ocotea quixos y Piper carpunya, potenciales fungo controladores. Qualitas, 11, 56-83. ISSN: 1390-6569.
Castañeda B., Ramos E y Ibáñez L. (2008). Evaluación de la capacidad antioxidante de siete plantas medicinales peruanas. Horizonte Medical, 8 (1), 56-72.
Cruzado, M.,Pastor, A., Castro N y Cedrón C. (2013). Determinación de compuestos fenólicos y actividad antioxidante de extractos de alcachofa (Cynara scolymus L.). Sociedad Química del Perú. 79 (1)
Esteva-espinosa E. (2003). Uso farmacéutico de las hojas de alcachofa. Formación universitaria del farmacéutico: prácticas tuteladas. Fitoterapia, 22 (9): 138-140.
Finkel T y Holbrook N.J. (2000). Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature,408, 239- 247.
Fonnegra G y Jiménez S. (2007). Plantas medicinales aprobadas en Colombia: mastrante y borraja. Antioquia. 2a edición. Ed. Universidad de Antioquia, Colombia. 370p.
Gutiérrez Z, A., Ledesma R L., García G I. y Grajales C O. (2007). Capacidad antioxidante total en alimentos convencionales y regionales de Chiapas, México. Revista Cubana de Salud Pública, 33(1). Versión Online ISSN 0864-3466
Guzmán, S., Zamarripa, A y Hernández L (2015). Calidad nutrimental y nutracéutica de hoja de moringa proveniente de árboles de diferente altura. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 6(2), 317-330.
Hilgert N., Higuera M., Kristensen M. (2010).La medicina herbolaria en el contexto urbano. Estudio de caso en un barrio de la ciudad de Tandil. Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas, 9 (3), 177-190.
Jáuregui, A., Ramos-Escudero, F., Alvarado-Ortiz, C., y B. Castañeda. (2007). Evaluación de la capacidad antioxidante y contenido de compuestos fenólicos en recursos vegetales promisorios. Revista de la Sociedad Química de Perú, 73 (3), 142-149.
Quiñones, J., Trujillo, R., Capdesuñer, Y., Quirós, Y. y Hernández de la Torre M. (2013). Potencial de actividad antioxidante de extractos fenólicos de Theobroma cacao L. (cacao). Revista Cubana de Plantas Medicinales, 18 (2).
Machaca, F. (2014). Efecto toxicológico del jincho (Heracium neoherrerae), altamisa (Ambrosia arborescens), diente de león (Taraxacum officinale), huira huira (Pseudognaphalium spicatum) y mishico (Bidens andicola) en ratas (wistar). Investigaciones altoandinas, 16 (01).
Madaleno, I. M y Montero, M. C. (2012). El cultivo urbano de plantas medicinales, su comercialización y uso fitoterapéuticos en la ciudad de Río Cuarto, provincia de Córdoba, Argentina. Cuadernos Geográficos, 50,63-85.
Maldoni B (1991). Alkaloids Isolation and Purification. J Chem Educ, 68: 700- 703.
Martínez M. A. (1998). Manual de prácticas para el laboratorio de Fitoquímica. Universidad de Antioquia, Medellín, 700-703.
Murillo, E. y Méndez, J. (2007). Guía metodológica para la detección rápida de algunos metabolitos secundarios. Ibagué, Colombia: Universidad de Tolima.
Olson M. y Fahey J (2011). Moringa oleifera: un árbol multiusos para las zonas tropicales secas. Revista Mexicana de Biodiversidad 82: 1071-1082.
Pérez-Guerrero C., Herrera M. y Ortiz R. (2001). A pharmacological study of Cecropia obtusifolia Bertol aqueous extract. Journal Ethnopharmacology, 76(3),279-284.
Prior, R. L., Wu, X y Schaich, K. (2005).Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53, 239–262.
Rojano B., Sáez J., Schinella G., Quijano J, Vélez E y Gil A. (2008). Experimental and theoretical determination of the antioxidant properties of isoespintanol (2- Isopropyl-3, 6-dimethoxy-5-methylphenol). Journal of Molecular Structure. 877:1- 6.
Valenzuela S, R., Morales R, M., Verde S, M., Oranday C, A.,Preciado-R, P., González, J y Esparza R, J. (2015). Cnidoscolus chayamansa hidropónica orgánica y su capacidad hipoglucemiante, calidad nutracéutica y toxicidad. Revista Mexicana Agrícola, 6(4), 815-825.
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