Susceptibility of larval stages of Leptophobia aripa Boisduval (Lepidoptera: Pieridae) to entomopathogens

Keywords: Entomopathogens, Leptophobia aripa, mortality, larval stages, agricultural pest, efficacy, susceptibility

Abstract

Under laboratory conditions, the efficacy of four formulations based on Bacillus subtilis, Bacillus thuringiensis var kurstaki, Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana plus a control (distilled water) on the larval development stages of the Leptophobia aripa Boisduval plague were evaluated. 15 larvae were collected for each stage, placed in groups of 5 per plate for a total of five treatments with three repetitions. As food, leaves of the cabbage crop were taken and sprinkled with the products as appropriate. The larvae were examined under a stereoscopic microscope for 7 days, and the Abbott formula was used to determine the percentage of mortality. Among the results, in the case of the first and second larval stage, the entomopathogens B. thuringiensis var kurstaki had higher efficiency with 56.70% and 60% mortality respectively, in the third and fourth stage the species B. bassiana shows greater effectiveness with 66.70% and 50%, in the fifth stage M. anisopliae registers a mortality of 36.70%. The third larval stage was selected as the most susceptible to the application of B. thuringiensis var kurstaki, B. bassiana and M. anisopliae respectively.

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References

Abbott, W.S (1925). Un método para calcular la efectividad de un insecticida. J. Econ. Entomol; 18: 265-267.

Alvarez, A., & del Valle Loto, F. (2012). Characterization and biological activity of Bacillus thuringiensis isolates that are potentially useful in insect pest control. Biodiversity Enrichment in a Diverse World, 133.

Attathom, T. (2002). Biotechnology for insect pest control. Sustainable Agricultural System in Asia, 2, 73-84.

Ayala, L., Bocourt, R., Castro, M., Milián, G., Oliva, D., y Herrera, M. (2012). Suministro de un cultivo de Bacillus subtilis a cerdas gestantes. Respuesta productiva en su descendencia. Revista Computadorizada de Producción Porcina, 19 (4).

Azevedo, S. M. F. O., & Vasconcelos, V. (1998). Toxinas de cianobactérias: causas e conseqüências para a saúde pública. Medicina on line, 3(1), 1-19.

Barboza C., J. E., López- M., & Ibarra, J. E. (1998). Caracterización de una cepa mexicana de Bacillus thuringiensis ssp. kenyae: Un análisis de su baja toxicidad hacia lepidópteros. Vedalia 5: 3-12

Bautista, N., y Véjar. G (1999). Lepidópteros más comunes en las hortalizas, In S. Anaya and J. Nápoles [eds.], Hortalizas Plagas y Enfermedades. Trillas, México.

Bustillo, P. A. E., & Gutiérrez, B. D. (1975). Ciclo de vida de Leptophobia aripa (Boisduval) (Lepidoptera: Pieridae) plaga del repollo y la col. Rev. Colomb. Entomol, 1, 1-5.

Camacho M., R., E. M. Aguilar M., H. Quezada, O. Medina C., G. Patino L., H. M. Cárdenas C., and R. Ramos P. (2017). Characterization of Cry toxins from autochthonous Bacillus thuringiensis isolates from Mexico. Boletín Médico del Hospital Infantil de México. 74 (3): 193-199. https://doi.org/10.1016/j.bmhimx.2017.03.002

Cuevas-Salgado, M. I., & Rodríguez-Morales, M. P. (2015) infusiones botánicas para el control de Leptophobia aripa elodia Boisduval (Lepidoptera: Pieridae) en brócoli (Brassica Oleracea var. Italica) bajo condiciones de laboratorio. Bol. Soc. Mex. Ento. (nueva serie) Número especial 1: 71-77.

De la Rosa, W., Figueroa., M. and Ibarra, J. E. (2005). Selection of Bacillus thuringiensis strains native to Mexico and active against the coffee berry borer Hypothenemus hampei (Ferrari) (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae). Vedalia 12 (1): 3-9.

Flores, A., Egúsquiza, R., Alcarraz, M., Woolcott, J., Benavides, E., Godoy, J,……, Patiño Y .(2011). Biodiversidad de Bacillus thuringiensis aislados de agroecosistemas peruanos y evaluación del potencial bioinsecticida. Ciencia e Investigación, 14(1): 29-34.

Gandarilla-Pacheco, F. L., Garza, C. E. P., de Luna-Santillana, E. D. J., alemán-Huerta, M. E., & Quintero-Zapata, I. (2020). Evaluación de hongos entomopatógenos sobre estadios larvarios de Aedes aegypti Linnaeus, 1762 (Diptera: Culicidae).

García Cochagne, J., & Oré Eusebio, E. V. (2017). Guía ilustrada de plagas en plantas medicinales. http://repositorio.inia.gob.pe/handle/inia/725

García R., A., A. Reyes R., E. Ruíz S. y J. E. Ibarra. (2018). Aislados nativos del sureste de México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 9(3): 539- 551. https://doi.org/10.29312/remexca.v9i3.1213

García Rodríguez, A. P. (2011). Obtención de microorganismos con actividad probiótica a partir de excretas de pollo de ceba fermentada. Tesis DrSci. Instituto de Ciencia Animal. San José de las Laja, 133

Gómez, Mendoza. (2004). Guía para la producción de Metarhizium anisoplia. Ecuador. Publicación técnica Nо. 5, 13.

González-Castillo, M., Aguilar, C. N., & Rodríguez-Herrera, R. (2012). Control de insectos-plaga en la agricultura utilizando hongos entomopatógenos: retos y perspectivas. Revista científica de la Universidad Autónoma de Coahuila, 4(8), 42-55.

González, M., Posada, F. & Bustillo, A. (1993). Desarrollo de un bioensayo para evaluar la patogenicidad de Beauveria bassiana sobre Hypothenemus hampei. Revista Cenicafé (Colombia), 44 (3), 93-102.

Guardado, Y. M., Faggioli, C. E., Vega, S., de Bioma, P. W., & do Su, A (2015). Orthalicidae “Drymaeus (Mesembrinus) cf. discrepans (Sowerby, 1833)”… Locación:“Laguna de las Ranas”, Ahuachapán, El Salvador, América Central Fotografía: Diego Galdamez. Bioma Nº 34.

Hernández-Mejía, C., Flores-Gallardo, A., & Llorente-Bousquets, J. (2015). Morfología del corion en Leptophobia (Lepidoptera: Pieridae) e importancia Taxonómica. Southwestern Entomologist, 40(2), 351-368.

Jarillo, M. A., y Muñis R. B. (2001). Insectos plaga de brócoli y coliflor y sus enemigos naturales en la región del Bajío, México. Publicación especial número 2. INIFAP, 26 p.

King A.B.S., y Saunders, J.L. (1984). Las plagas invertebradas de cultivos anuales alimenticios en América Central. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE). Turrialba, Costa Rica, C.A. p. 50-51.

Lastra, J. A. S., Barrios, L. E. G., Rojas, J. C., & Rivera, H. P. (2006). Host selection behavior of Leptophobia aripa (Lepidoptera: Pieridae). Florida Entomologist, 89 (2), 127-134.

Le Masurier, A. D. (1994). Costs and benefits of egg clustering in Pieris brassicae. Journal of animal Ecology, 677-685.

Malpartida-Zevallos, J., Narrea-Cango, M., & Dale-Larraburre, W. (2013). Patogenicidad de Beauveria bassiana (Bals) Vuill., sobre el gusano defoliador del maracuyá Dione juno (Cramer) (Lepidoptera: Nymphalidae) en laboratorio. Ecología Aplicada, 12(2), 75-81.

Marín, P., & Bustillo, A. (2002). Pruebas microbiológicas y fisicoquímicas para el control de calidad de los hongos entomopatógenos. Memorias Curso Internacional Teórico-Práctico sobre entomopatógenos, parasitoides y otros enemigos naturales de la broca del café. Cenicafé, Chinchiná, 72-89.

Mendoza-Estrada, L. J., Hernández-Velázquez, V. M., Arenas-Sosa, I., Flores-Pérez, F. I., Morales-Montor, J., & Peña-Chora, G. (2016). Anthelmintic effect of Bacillus thuringiensis strains against the gill fish trematode Centrocestus formosanus. BioMed research international.

Nester, E.W., Thomashow, L.S., Metz, M., and M. Girdon. (2002). 100 years of Bacillus thuringiensis, a Critical Scientific Assesment, ASM/Washington. D.C.

Pérez, A., Elcure, F. M., Sánchez, J., Penna, D. A., y Monroy, C. S. (2012). Registro de Conura sp. grupo immaculata (Hymenoptera: Chalcididae) parasitando Leptophobia aripa (Lepidoptera: Pieridae) en Brassica oleracea var. italica. Entomotropica, 27(2): 99–101.

Rodríguez, A. V., Cornejo, A., Sánchez, K. C., Herrera, H. C., & Salinas, S. J. (2021). importancia de los entomopatógenos en el control de la plaga Spodoptera frugiperda (SMITH) en el cultivo del maíz morado. REBIOL, 40(2), 206-217. http://dx.doi.org/10.17268/rebiol.2020.40.02.08

Salinas, J. P. (1992). Los insectos de las Crucíferas en Venezuela. Universidad de Los Andes. Mérida, Venezuela, 17 p.

Sánchez López, R. (2004). Protocolo de cría para dos especies de mariposas, Ascia monuste y Leptophobia aripa (Lepidoptera: Pieridae) bajo condiciones controladas en el municipio de La Mesa, Cundinamarca. Tesis Lic. Bogotá, Col. Pontificia Universidad Javeriana, Facultad de Ciencias, Carrera de Biología. 159 p.

Santiago, J. A., Garcia Barrios, L., Perales Rivera, H., & Rojas, J. C. (2008) Alternativas de control de Leptophobia aripa en el cultivo de repollo en Los altos de Chiapas, Mexico. Centro Agronomico Tropical de Investigacion y Enseñanza, Turrialba (Costa Rica), (79-80), 49-58.

Stamp, N. (1980). Egg deposition patterns in butterflies: why do some species cluster their eggs rather than deposit them singly. The American Naturalist, 115, 367-380.

Tanada, Y. y Kaya, HK (2012). Patología de insectos. Prensa académica.

Trabanino, R. (1998). Guía para el manejo integrado de plagas invertebradas en Honduras. Zamorano Academic Press. Escuela Agrícola Panamericana Zamorano, Tegucigalpa, Honduras, 24-26.

Vachon, V., Laprade, R. y Schwartz, JL (2012). Modelos actuales del modo de acción de las proteínas cristalinas insecticidas de Bacillus thuringiensis: una revisión crítica. Revista de patología de invertebrados, 111 (1) ,1-12. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=213016787013

Published
2021-05-04
How to Cite
Valverde-Rodríguez, A., Miguel-Villanueva, N., Briceño-Yen, H., & Cornejo y Maldonado, A. (2021). Susceptibility of larval stages of Leptophobia aripa Boisduval (Lepidoptera: Pieridae) to entomopathogens. Science Magazine Unemi, 14(36), 12-20. https://doi.org/10.29076/issn.2528-7737vol14iss36.2021pp12-20p
Section
Artículos Científicos